Histologie

  • Action régionale
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  •   Connaissances scientifiques
  •    Maryline FAVIER , Rachel ONIFARASOANIAINA , Fabiola ELYMARIUS
  •    Maryline FAVIER

Objectifs

  • S’initier aux techniques histologiques sur tissus inclus en bloc de paraffine ou tissus congelés.
  • Techniques de préparations du tissu, coupe des tissus au microtome ou au cryostat, coloration standard et spécifique, observation, immunohistochimie, scanner de lames, microdissection laser.

A la fin du stage, les participants auront vu différentes techniques de préparation et de coupes de tissu. Ils auront congelé du tissu frais et inclus des tissus en bloc de paraffine, auront effectués eux-mêmes des coupes au microtome et cryostat, des colorations histologiques et une immunohistochimie, observé la microdissection de régions tissulaires et pratiqué des observations sur scanner de lames.

 

NB : Le contexte sanitaire nous contraint à limiter le nombre de participants aux sessions de formation. Dans l’éventualité où  la formation serait proposée à distance, vous serez immédiatement contacté.e. 

Public

Techniciens, ingénieurs et chercheurs.

Programme

Jour 1 :

  • Matin : Présentation du stage et théorie (cours d’histologie)
  • Après-midi : Ateliers .

Atelier 1 : Inclusion en blocs de paraffine

Atelier 2 : Préparation des tissus congelés

Jour 2 :

  • Matin : Ateliers

Atelier 1 : Coupes au microtome

Atelier 2 : Coupes au cryostat

  • Après-midi : Groupe entier

- Colorations standards et spécifiques

- Immunomarquage

Jour 3 :

  • Matin : Scanner de lames et observation des lames (hammamatsu et perkin)
  • Après-midi : Introduction à la microdissection laser
  • Debriefing du stage.

NB:
==> Si vous avez déjà des échantillons de tissus, en blocs de paraffine ou congelés, sur lesquels vous rencontrez des difficultés ou sur lesquels vous souhaitez vous entrainer plus particulièrement, n'hésitez pas à les amener pour voir ce qu'il est possible de faire.
==> Si vous avez des lames colorées que vous souhaitez nous montrer, n'hésitez pas non plus.

 

Méthodes pédagogiques

Matériels utilisés:

Table d'inclusion (Sakura)
2 Microtomes (Leica)
2 Cryostats (Leica et MM France)
Automate de coloration (Leica)
Scanner de lames (Lamia,Perkin Elmer et Nanozoomer, hamamatsu)

Sessions passées 6

Mercredi 05 Juin 2019
Mercredi 13 Mai 2020
Mercredi 07 Octobre 2020
Mercredi 06 Octobre 2021
Mercredi 16 Mars 2022
Mercredi 19 Octobre 2022

Partenaires

CNRS

Informations pratiques

IFSeM Formation
7, RUE GUY MÔQUET
94800 VILLEJUIF